key: cord-0827317-v9nub41r authors: Ragull, S.; Núñez-Gómez, A.; Aretxalde, MC.; Zabala, N.; Párraga-Niño, N.; Sabrià, M. title: Bajo riesgo de contagio ambiental por SARS-CoV-2 en espacios no sanitarios date: 2022-02-08 journal: Enferm Infecc Microbiol Clin DOI: 10.1016/j.eimc.2022.01.015 sha: 6a0a18a530304176bf34bc128b21f3c5ddc978a5 doc_id: 827317 cord_uid: v9nub41r Objetivo: Estudiar la presencia de SARS-CoV-2 en superficies (alto, medio y bajo contacto) y aires de espacios no sanitarios pero de elevada afluencia de público para evaluar el riesgo de contagio ambiental. Método: Se ha realizado el análisis de las superficies y de los aires por RT-qPCR para detectar la presencia de SARS-CoV-2. 10 Resultados: Se obtuvieron 394 superficies y 23 muestras de aire de espacios de alta afluencia de personas como oficinas, centros comerciales y residencias de ancianos. El virus no fue detectado en ninguna de las muestras analizadas. Conclusión: Aunque no podemos concluir rotundamente que no existe un riesgo de infección ambiental por SARS-CoV-2 en espacios no sanitarios, sí que podemos afirmar que el riesgo es casi nulo. Objective: To study the presence of SARS-CoV-2 on surfaces (high, medium and low contact) and airs in non-sanitary spaces with high public influx to evaluate the risk of environmental contagion. Methods: Surfaces and airs were analysed by RT-qPCR to detect the presence of SARS-CoV-2. Results: 394 surfaces and air samples were obtained from spaces with high public influx such as offices, shopping centres and nursing homes. The virus was not detected in any of the samples analysed. Conclusion: Although we cannot emphatically conclude that there is no risk of environmental 27 infection by SARS-CoV-2 in non-sanitary spaces, we can affirm that the risk is almost non- existent. Methods: Surfaces and airs were analysed by RT-qPCR to detect the presence of SARS-CoV-2. Results: 394 surfaces and air samples were obtained from spaces with high public influx such as offices, shopping centres and nursing homes. The virus was not detected in any of the samples analysed. Conclusion: Although we cannot emphatically conclude that there is no risk of environmental 27 infection by SARS-CoV-2 in non-sanitary spaces, we can affirm that the risk is almost nonexistent. Palabras clave: SARS-CoV-2, transmisión aérea, contagio ambiental, transmisión por fómites, Introducción Los primeros casos de la enfermedad por el nuevo coronavirus se detectaron en China en diciembre del 2019 (COVID-19). En enero de 2020, la Organización Mundial de la Salud reconoció que el coronavirus tipo 2 (SARS-CoV-2) era el causante de la COVID-19. En España, se registró el primer caso el 31 de enero del 2020 en La Gomera (1) y el 11 de marzo, la Organización Mundial de la Salud declaró la enfermedad como pandemia. Al igual que otros coronavirus humanos, su vía de contagio se describió por contacto de persona a persona, por gotitas respiratorias, por aerosoles y por contacto con superficies contaminadas (2) . Se ha demostrado evidencia de contaminación ambiental en entornos sanitarios tanto para el SARS-CoV (3, 4) , como para el MERS-CoV (5, 6) . Más recientemente, se ha encontrado SARS-CoV-2 en las áreas alrededor de la cama, en el inodoro de los pacientes infectados e incluso en pasillos de hospital (7-9). Las pruebas de laboratorio demuestran que el SARS-CoV-2 puede sobrevivir en superficies hasta varios días (10,11) enfatizando aún más el riesgo de transmisión mediada por fómites, particularmente en los entornos sanitarios. Aun así, en estos entornos la contaminación ambiental es baja (8, 12) . Respecto a entornos no sanitarios, existen ya artículos en los que se observa bajo riesgo de transmisión a partir del ambiente inanimado (13) . En el presente estudio, se evaluó el grado de contaminación por el virus SARS-CoV-2 de superficies y aires de espacios no sanitarios. Page 3 of 6 J o u r n a l P r e -p r o o f Durante un año (del 19 de mayo de 2020 al 14 de mayo de 2021) se recogieron 394 muestras de superficies y 23 muestras de aire (Material suplementario S1, anexo 1). Las muestras de superficies se recogieron en diferentes centros agrupados en: categoría 1 (centros comerciales, museos y escuelas), categoría 2 (centros médicos, centros de investigación, hospitales y residencias) y categoría 3 (empresas y oficinas). De la categoría 1 se recogieron 16 muestras, de la categoría 2 se recogieron 19 muestras y de la categoría 3 se recogieron 359. Un total de 43 muestras (35 muestras de superficies y 8 muestras de aire) se recogieron en espacios en los que previamente se habían notificado casos de COVID-19. Las 394 muestras de superficies se clasificaron según el uso que se hacía de ellas: 228 muestras de superficies de uso colectivo con alta afluencia (fotocopiadora, barandillas, pomos, cafetera, teclado fichaje), 85 muestras de uso colectivo con baja afluencia (mesas de salas de reuniones, mesas de comedor, bancos, papeleras) y 60 muestras de uso individual (teclado, ratones, pantallas y teléfonos). Además de estas superficies, también se recogieron 21 muestras relacionadas con la climatización. En 146 muestras se pudo correlacionar el momento del muestreo con el momento de desinfección de la superficie, por lo que se tiene información de si el muestreo fue pre-(71 muestras) o post-desinfección (75 muestras). Para analizar la presencia de material genético de SARS-CoV-2, se utilizó un hisopo de plástico de polipropileno estéril humedecido con medio de transporte viral (Biocomma, Guangdong, China) para tomar muestras de 25 cm 2 de superficie. Los hisopos se transportaron al laboratorio en un recipiente refrigerado. El ARN de las muestras se extrajo con el kit comercial Patho Gene-spin TM (iNtRON, New Taipei, China) dentro de las 48 horas posteriores al muestreo. Se muestreó un volumen de 1000 litros de aire con un muestreador de aire (Holbach MBASS30v3, Wadern, Alemania) usando filtros de gelatina (Sartorius, Gotinga, Alemania). El transporte al laboratorio se realizó en un contenedor estéril hasta su procesamiento (48 horas en recipiente refrigerado). El filtro se resuspendió en 4 ml de agua (filtros de 80 mm, 17528-80-ACD). El filtro se disolvió a 37ᵒC durante 10 minutos y posteriormente se procedió a la extracción del ARN. Page 4 of 6 J o u r n a l P r e -p r o o f Para la detección del ARN de SARS-CoV-2 se utilizó la técnica cuantitativa de PCR (qPCR) mediante la detección de dos genes (14) . Los cebadores utilizados son los aprobados por el Centro Europeo para la Prevención y Control de Enfermedades (ECDC) (15) para la amplificación de la región N1: 2019-nCoV_N1-F (GACCCCAAAATCAGCGAAAT), 2019-nCoV_N1-R (TCTGGTTACTGCCAGTTGAAT) y la sonda 2019 nCoV_N1-P (FAM-ACCCCGCATTACGTTTGGTGGACC-BHQ1). Para la amplificación de la región RdRp se utilizaron los cebadores y la sonda recomendados por la Organización Mundial de la Salud: RdRP_SARSr-F2 (GTGARATGGTCATGTGTGGCGG), RdRP_SARSr-R1 (CARATGTTAAASACACTATTAGCATA) y la sonda RdRP_SARSr-P2 (FAM-CAGGTGGAACCTCATCAGGAGATGC-BBQ). La polimerasa utilizada para realizar la retrotranscripción fue la TaqPath 1-step RT-qPCR Master Mix (Applied biosystems, Massachusetts, Estados Unidos). La mix para realizar la retrotranscripción y amplificación fue: 5 μl TaqPath 1-step, 1 μl cebador F 500 nM, 1 μl cebador R 500 nM, 1 μl sonda 125 nM, 7 μl H2O y 5 μl de ARN. El proceso se realizó en el equipo LightCycler 480 Real-Time PCR System (Roche, Basilea, Suiza) para la detección de ARN viral. El programa utilizado fue: 15 minutos a 50ᵒC, 2 minutos a 95ᵒC, Sanidad confirma en La Gomera el primer caso de coronavirus en España COVID-19: a review on the novel coronavirus disease: evolution, transmission, detection, control and prevention Severe acute respiratory syndrome coronavirus on hospital surfaces Environmental contamination and viral shedding in MERS patients during MERS-CoV outbreak in South Korea Extensive viable Middle East respiratory syndrome (MERS) coronavirus contamination in air and surrounding environment in MERS isolation wards Air, surface environmental, and personal protective equipment contamination by severe acute respiratory syndrome coronavirus 2 (SARS-CoV-2) from a symptomatic patient Breath-, air-and surface-borne SARS-CoV-2 in hospitals CoV-2 in hospital areas Persistence of coronaviruses on inanimate surfaces and their inactivation with biocidal agents Aerosol and surface stability of SARS-CoV-2 as compared with SARS-CoV-1 The role of environmental factors to transmission of SARS-CoV Transmission of COVID-19 and other infectious diseases in public washrooms: a systematic review Molecular biology of the gene Environmental contamination of SARS-CoV-2 in a non-healthcare setting First detection of severe acute respiratory syndrome coronavirus 2 on the surfaces of touristrecreational facilities in Italy Detection of SARS-CoV-2 RNA on public surfaces in a densely populated urban area of Brazil: a potential tool for monitoring the circulation of infected patients